Гидробиологический анализ

Выбор станции исследования и горизонты отбора проб. Наиболее надежним методом отбора проб фитопланктона считается батометрический метод. Пробы, отобранные этим методом, используют как для количественного учета, так для качественной характеристики пробы. Для выявления наиболее полного флористического состава фитопланктона используют планктонные сетки. Батометр Рутнера Методы изучения фитопланктона Этикетирование проб.

Методы обработки фитопланктона: Количественные методы. Методы подсчета водорослей. N=nv 1 /v 2 w, где N – число клеток в 1 см 3 воды, n – число клеток в камере объемом 1 мм 3, v 1 – объем концентрата пробы, v 2 – объем камеры, w – объем профильтрованной воды Если объем профильтрованной воды и концентрата постоянный (w=500 см 3, v 1 =5 см 3 ), то формула принимает вид N=n*10. Пример: В камере объемом 1 мм 3 было подсчитано 400 клеток. Объем v 1 =5 см 3, w=500 см 3. То получаем: N=400*5/0.001*500=4000 кл./мл. или в переводе на литр 4 млн. кл/л. Для достоверности общая численность в пробе должна быть не менее 3 тыс. кл./мл. Методы вычисления биомассы. Биомасса измеряется в мг/л или г/м 3.

Методы сбора зоопланктона. Орудия для сбора. Все разнообразие методов сбора сводиться к двум вариантам: методы, представляющие комбинацию водозачерпывания и одновременного отделения планктона от воды в самой воде с помощью планктонной сети и планктоночерпателей; методы, представляющие комбинацию раздельного водозачерпывания и последующего отделения планктона от воды с помощью фильтрации через сетку или посредствам отстаивания; Метод отбора проб зависит от типа водоема, его глубины и размеров. Методы изучения зоопланктона

Орудия для количественного отбора проб зоопланктона Существует целый ряд количественных сетей, самыми распространенними из которых являются сети Джеди, Нансена, Апштейна и планктонночерпатели. Замыкающаяся количественная сеть Джеди Замыкатель для планктонных сетей

В мелководных водоемах (прудах, мелких лесных озерах, лагунах), глубина которых не превышает 3-4 м, используется качественная сетью Джеди. В водотоках, главним образом в реках, для сбора качественных проб используется цилиндрическая сеть Лангганса («Цеппелин). цилиндрическая сеть Лангганса («Цеппелин») Качественная сеть Апштейна со стаканом Орудия для качественного отбора проб

Консервация и этикетирование зоопланктонных проб Фиксируют зоопланктонную пробу: 40%-ним формалином, так чтобы в пробе он стал 4%-ним, спиртом - для этого количество воды в пробе доводят до минимума и наливают 96-градусный этиловый спирт. Каждая проба зоопланктона должна быть тщательно этикетирована и записана в специальный журнал или полевой дневник. Место и периодичность отбора проб Сборы зоопланктона с целью контроля качества вод осуществляются в местах постоянных гидробиологических исследований. Выбор места отбора проб зависит прежде всего от местоположения источников загрязнения. При изучении влияния загрязнения на основании анализа зоопланктонного сообщества желательно производить отбор проб один раз в зимний, весенний и осенний периоды и три раза в летний.

Методы обработки зоопланктона Качественная обработка проб сводится к точному определению видовой принадлежности входящих в его состав организмов. Количественная обработка проб заключается в подсчете количества организмов каждого вида по возможности по возрастним стадиям или размерним группам. Для подсчета количества используют в основном счетный метод. Если проба отобрана путем процеживания воды через сеть Апштейна, расчет производится следующим образом: x=n*1000/v, где x - количество организмов в 1 м 3, экз./м 3 ; n - количество организмов в пробе, экз.; v - объем воды, процеженный через сеть, л. Если отбор проб произведен количественной сетью Джеди, то сначала рассчитывают коэффициент планктонной сети (или множитель перевода на 1 м 3 ) исходя из радиуса его входного отверстия. Коэффициент рассчитывается следующим образом: k= /sh, где s - площадь входного отверстия сети, см 2 ; h - горизонт, слой облова, см. Вычислив коэффициент сети при горизонте облова 0-1 м, находим коэффициент при горизонтах 0-2, 2-5, 5-10 и т.д. Численность организмов N находится умножением количества организмов в пробе n на коэффициент сети k.

Получение данных по биомассе Биомасса зоопланктона определяется умножением индивидуальной массы (веса) каждого организма на его численность. Степенное уравнение выражающее зависимость между массой и длиной тела: w=gl b, где l – длина тела, мм; w – масса тела, мг; g – масса тела, мг сырой массы при длине тела равной 1 мм; b – показатель степени. Промеры организмов осуществляются под бинокуляром по возрастним стадиям: взрослые формы, молодь, яйценосные самки. Измеряются не менее 30 экз. каждого вида определенной стадии.

Донная фауна. Методы отбора проб. Фауна грунта. Основними орудиями сбора на количественный анализ донных беспозвоночных – обитателей поверхностного слоя и толщи грунта – являются дночерпатели. Универсального дночерпателя для работы на всех типах грунта нет. Дночерпатели Экмана-Берджа Дночерпатели Петерсена Модифицированная модель Модифицированная модель Метод изучения макрозообентоса

Отбор проб для качественного анализа можно производить тоже дночерпателями, а также скребками, драгами и тралами различной конструкции. Промывка осуществляется сачками-промывалками. скребок тралы драги

Фиксирование и хранение проб зообентоса. Отобранных живых беспозвоночных сразу помещают в 4% формалин. В каждую пробу кладут этикетку, в которой записывается вся информация о станции и условиях. Форма этикетки на бентосной пробе Водоем________________________________________________ станции_____________________________________________ Местонахождение станции_______________________________ Глубина_______________________________________________ Биотоп________________________________________________ Орудие лова____________________________________________ Дата отбора пробы______________________________________ Разборка бентосных проб

Сбор материала С естественных субстратов. Методы изучения перифитона Выбор места и времени отбора проб. С искусственных субстратов. Численность водорослей N подсчитывают по формуле: N=v 1 n/v 2 s, где v 1 – объем воды со взвесью об роста, v 2 – объем просмотренной части пробы, в которой обнаружено n клеток водорослей, s – площадь субстрата пробы. Биомассу определяют «объемним» методом, также как для фитопланктона. Полученные данные по численности выражают в кл/мм 2 (или млн. кл/м 2 ), по биомассе – в г/м 2 (или мг/м 2 ). Этикетирование проб

Обработка проб. Параллельно с определением видового состава перифитона оценивают частоту встречаемости h каждого вида по глазомерной шкале: 9 – очень часто (в каждом поле зрения много), 7 – часто (в каждом поле зрения), 5 – нередко (не во всех полях зрения), 3 – редко (в немногих полях зрения), 2 – очень редко (в каждом препарате единично), 1 – единично (единичные экземпляры в пробе). Массовыми (доминантними) видами, образующими руководящий комплекс, считаются такие, обилие которых составляет 5-9 баллов; субдоминантами те, обилие которых составляет 3 балла; единичними обилие 1-2 балла.

Приборы для сбора и количественного учета макрофитов. Для качественного анализа. грабельки трех- и шестизубовые якорьки-кошки двусторонние водяные грабли драга Л.Г. Раменского четырехугольная драга с зубцами (первая модель драги Лепиловой) смотровая труба Методы изучения высшей водной растительности

Для количественного учета макрофитов, для подсчета количества стеблей, определения проективного покрытия и взятия укосов в сообществах всех групп растений широко используются различного типа рамы в 1, 0.5 и 0.25 м 2 и других размеров, форм. косазарослечерпатели Жизненность – приспособленность растений к условиям местообитания. Они делятся на ступени: 3 – виды с полним циклом развития, нормального роста, цветут и плодоносят; 2 – вегетативное развитие ниже нормального, способность цвести и плодоносить не утеряна; 1 – виды явно угнетенные. Ступени 4 и 5 обозначают чрезмерное развитие и развитие выше нормального