ВЛИЯНИЕ ИММОБИЛИЗАЦИИ ИФИЗИЧЕСКИХ УСЛОВИЙКУЛЬТИВИРОВАНИЯ НА СОДЕРЖАНИЕГИДРОКСИКОРИЧНЫХ КИСЛОТ ВКЛЕТОЧНЫХ КУЛЬТУРАХЭХИНАЦЕИ ПУРПУРНОЙ Подготовила: магистранткаКарманович.

Презентация:



Advertisements
Похожие презентации
Изучение регуляции ростовых процессов каллусной культуры Trigonella foenum – graecum, или пажитника греческого Научный руководитель: доцент, к.б.н. Дитченко.
Advertisements

Существует несколько типов культур клеток и тканей растений, в зависимости от способа их получения, условий культивирования и происхождения. Если культивирование.
Динамика содержания марганца и пигментов фотосинтеза в хвое сосны обыкновенной в зависимости от сезонности Автор: Перевышина Кристина 10 класс, МОУ лицей.
1 Субстраты для культивирования биообъектов. 2 Отходы как сырье для биотехнологических процессов. 3 Химические и нефтехимические суб­ страты, применяемые.
Разработка биотехнологии промышленного получения клеточной массы лишайника Cetraria islandica (исландский мох)
Кривая опыта связана с процессом обучения. В результате эмпирических исследований доказано, что при многократном выполнении повторяющихся задач затраты.
Обложка Доклад В.П.Иванова «Состояние и перспективы развития российской химической и нефтехимической промышленности»
Зеленые водоросли камчатского шельфа как объекты марикультуры и сырья для производства пищевой лечебно-профилактической продукции Автор: КамчатГТУ Очеретяна.
ВЛИЯНИЕ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ НА МОРФОМЕТРИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ РАСТЕНИЙ ЯЧМЕНЯ И ГОРОХА БЕЛОРУССКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Биологический факультет Кафедра.
Изучение роста популяции Daphnia magna в лабораторных условиях Исполнитель : Буркова Елена, 8 класс МОУ « ВГЛ » Руководитель : Мичукова М. В. п. д. о,
БИОТЕХНОЛОГИЯ Работу выполнила: Григорьева Анастасия Андреевна студентка группы ПТ-1602 Проверил преподаватель: Анискина Мария Владимировна 1 1.
ReishiMax GLp. ReishiMax комплекс специально разработанный для поддержания нормальной работы иммунной системы. Экстракт из этого гриба повышает естественную.
Работу выполнил: Милованов Иван. Клонирование в самом общем значении точное воспроизведение какого-либо объекта N раз. Объекты, полученные в результате.
Разработка составов микроэмульсий для повышения нефтеотдачи пластов Тюмень 2011 Кафедра: «Переработка нефти и газа» Конкурс грантов для поддержки научно-исследовательской.
ЦЕНТР БИОТЕХНОЛОГИЙ И ФАРМАЦЕВТИКИ Академик В.Н. Большаков Академик О.Н. Чупахин.
«Высокоэффективная биотехнология микроклонального размножения хозяйственно-ценных и редких видов растений в условиях in vitro» Нижний Новгород 2012.
Выполнила: Микитчук Елена Петровна Научный руководитель: Афоненко А. А. Минск, 2012 Белорусский государственный университет Факультет радиофизики и компьютерных.
Пенобетон на основе бесцементного наноструктурированного вяжущего Павленко Н.В.
ФОРУМ «ЛОГИСТ 2009» Таможня Транспорт Переход от использования полной грузовместимости к мелкопартионным отправкам. Можно ли считать мелкопартионную доставку.
ООО «Научная компания «Фламена» Презентация продуктов и научных разработок.
Транксрипт:

ВЛИЯНИЕ ИММОБИЛИЗАЦИИ ИФИЗИЧЕСКИХ УСЛОВИЙКУЛЬТИВИРОВАНИЯ НА СОДЕРЖАНИЕГИДРОКСИКОРИЧНЫХ КИСЛОТ ВКЛЕТОЧНЫХ КУЛЬТУРАХЭХИНАЦЕИ ПУРПУРНОЙ Подготовила: магистранткаКарманович Е.В. Научный руководитель: доцент, к.б.н. Дитченко Т.И.

Содержание Актуальность Цель работы Объекты исследований Результаты Выводы

Актуальность Растения являются уникальными источниками многих биологически активных соединений. Несмотря на успехи в области применения синтетических лекарств, препараты природного происхождения приобретают все больший вес в практической медицине. Их несомненными преимуществами является широкий спектр биологической активности и экологическая безопасность изготовления, что особенно важно в наше время. Однако в связи с увеличивающимся дефицитом и стоимостью лекарственного растительного сырья, получаемого, как правило, из экзотических, редких и исчезающих видов диких и плантационных растений, на сегодняшний день не представляется возможным полностью обеспечить потребности фармакологической, косметической, а также пищевой промышленности в биологически активных соединениях растительного происхождения. Поэтому в условиях, когда необходимо постоянно увеличивать долю лекарственных субстанций отечественного производства, представляется важным развивать технологии, создающие надежную сырьевую базу для выработки отечественных препаратов.

В связи с этим большой практический интерес представляют приемы получения фитомассы, основанные на культивировании в искусственных условиях на питательных средах растительных клеток. Обладая рядом преимуществ, этот метод составляет альтернативу природным источникам ценных соединений: 1. Это радикальное решение проблемы дефицита исходного сырья, возможность получения целевого продукта в течение всего года, полная независимость от климата, погоды, почвенных условий, вредителей, а также значительная экономия площадей, занимаемых культивируемыми растениями. 2. Использование вместо интактных растений их клеточных культур значительно расширяет возможности управления процессом биосинтеза целевых продуктов. 3. В результате оптимизации и стандартизации условий культивирования, содержание ценных метаболитов в растительных клетках in vitro и их качественный состав могут превышать таковые в интактных растениях.

Цель работы Исследование характера влияния иммобилизации и физических условий культивирования ( (температуры, света, слабого электрического тока) на прирост биомассы и содержание гидроксикоричных кислот в клеточных культурах эхинацеи пурпурной

Объекты исследований каллусная и суспензионная культуры эхинацеи пурпурной

Результаты Рис. 1. Кривые роста каллусной (А) и суспензионной культуры (Б) эхинацеи пурпурной

Рис. 2. Динамика изменения сухого веса (А) свободных и иммобилизованных клеток суспензионной культуры Echinacea purpurea и содержания в них ГК (Б) в ходе ростового цикла

Рис. 3. Влияние иммобилизации на суммарное содержание ГК (%) в клетках Echinacea purpurea и среде культивирования на разных стадиях ростового цикла

Рис. 4. Динамика прироста биомассы каллусов Echinacea purpurea, культивируемых при разных температурах

Рис. 5. Влияние температуры на показатели прироста биомассы каллусов Echinacea purpurea на отдельных стадиях ростового цикла

Показатели роста каллусной культуры Echinacea purpurea, выращиваемой при разных температурах Таблица 1 Температура, °СУдельная скорость роста, сут -1 Время удвоения биомассы, сут 180,015±0,00247,1±6,5 210,034±0,00722,5±5,1 24,50,069±0,00210,3±0,3 270,078±0,0099,1±1,0 300,056±0,00412,4±0,9 30,031±0,00423,3±3,1

Рис. 6. Динамика изменения содержания ГК в каллусах Echinacea purpurea, культивируемых при разных температурах

Рис. 7. Содержание ГК в каллусах Echinacea purpurea на отдельных стадиях ростового цикла при варьировании температурных условий культивирования

Рис. 8. Температурная зависимость продукции ГК каллусной культурой Echinacea purpurea

Рис. 9. Влияние условий освещения на индекс роста каллусов Echinacea purpurea (А) и содержание в них ГК (Б) на отдельных стадиях ростового цикла

Рис. 10. Влияние света на продукцию ГК каллусной культурой Echinacea purpurea

Рис. 11. Динамика изменения содержания фотосинтетических пигментов в каллусной культуре Echinacea purpurea в ходе ростового цикла

Рис. 12. Влияние слабого электрического тока (1,5 мкА) на содержание ГК в каллусах Echinacea purpurea, культивируемых в темноте (А) на свету (Б)

Выводы 1. Включение клеток суспензионной культуры эхинацеи пурпурной в полисахаридный носитель (Са-альгинатый гель) вызывает стимуляцию накопления ГК только при переходе к стационарной фазе ростового цикла. Количество экскретируемых ГК на всех стадиях ростового цикла выше у иммобилизованных в Са-альгинатном геле клеток суспензионной культуры Echinacea purpurea по сравнению со свободными клетками. 2. Температуры оптимальные для роста и накопления ГК в каллусной культуре эхинацеи различаются между собой. Максимальный прирост биомассы каллусов отмечается при 24,5-27 С, тогда как для накопления ГК в стационарную фазу ростового цикла оптимальной является температура 21 С.

3. Высокая скорость прироста биомассы клеток при температуре 27°С компенсирует более низкие уровни накопления ГК, и максимальная продукция анализируемых вторичных метаболитов каллусной культурой эхинацеи достигается при 27°С, т.е. при температуре, оптимальной для ростовых процессов. Использование пониженной температуры (21°С) для стимуляции накопления ГК культурой клеток эхинацеи пурпурной может быть оправданным только при двустадийном культивировании. 4. Культивирование каллусов эхинацеи на свету не оказывает достоверного влияния на величины прироста их биомассы на всех стадиях ростового цикла. Свет стимулирует образование ГК в каллусах эхинацеи, в результате чего общая продукция ГК каллусной культурой возрастает в 1,6 раза по сравнению с каллусами, инкубируемыми в темноте. 5. Действие слабого электрического тока (1,5 мкА) на каллусы эхинацеи, культивируемые в темноте, приводит к достоверному увеличению содержания ГК только в холе лог-фазы цикла выращивания. Для каллусов, культивируемых на свету, стимулирующий эффект наблюдается в ходе лог-фазы и стационарной фазы ростового цикла.

Спасибо за внимание!